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实验原理
本实验采用双抗体夹心 ABC-ELISA法。用抗小鼠 sICAM- 单抗包被于酶标板上，标准品和样品中的 sICAM-与单抗结合，加入化的抗小鼠sICAM-，形成免疫复合物连接在板上，辣根过氧化物酶标记的Streptavidin与结合，加入底物工作液显蓝色，zui后加终止液硫酸，在450nm处测OD值，sICAM-浓度与OD值成正比，可通过绘制标准曲线求出标本中sICAM-浓度。
试剂盒组成（2-8℃保存）
酶标板（Coated Wells）
96孔
酶标抗体工作液（Enzyme Conjugate）
2ml
0×标本稀释液（Sample Buffer）
2ml
20×浓缩洗涤液（Wash Buffer）
50ml
标准品（Standards）：.2ng/瓶
2瓶
底物工作液（TMB Solution）
2ml
抗体工作液（Biotinylated Antibody）
2ml
终止液（Stop Solution）
2ml
准备试剂与收集血样
. 收集标本：血清、血浆（EDTA、柠檬酸盐、肝素抗凝）、细胞培养上清液、组织匀浆等尽早检测，2-8℃保存48小时；更长时间须冷冻（-20 ℃或-70 ℃）保存，避免反复冻融。标本测定前用标本稀释液至少作： 00稀释（取0ul，加标本稀释液990ul,稀释00倍）。
2. 标准品液配制：使用前加入0.3ml蒸馏水混匀，配成4000pg/ml的溶液。设标准管8管，每管加入标本稀释液200ul。在管中加入4000pg/ml的标准品溶液200ul混匀后用加样器吸出200ul，移至第二管。如此反复作对倍稀释，从第七管中吸出200ul弃去。第八管为空白对照。
3. 0×标本稀释液用蒸馏水作:0倍稀释（示例：ml浓稀释液+9ml蒸馏水）。
4. 洗涤液：用重蒸水:20稀释（示例：ml浓缩洗涤液加入9ml的重蒸水）
检测程序
. 加样：每孔各加入标准品或待测样品00ul，将反应板充分混匀后置37℃20分钟。
2. 洗板：用洗涤液将反应板充分洗涤4-6次，向滤纸上印干。
3. 每孔中加入抗体工作液00ul。将反应板充分混匀后置37℃60分钟。
4. 洗板：同前。
5. 每孔加酶标抗体工作液00ul。将反应板置37℃30分钟。
6. 洗板：同前。
7. 每孔加入底物工作液00ul，置37 ℃暗处反应5分钟。
8. 每孔加入00ul终止液混匀。
9. 30分钟内用酶标仪在450nm处测吸光值。
结果计算与判断
. 所有OD值都应减除空白值后再行计算。
2. 以标准品2000、000、500、250、25、62.5、3.2、0 pg/ml为横坐标，OD值为纵坐标，在坐标纸上作图，画出标准曲线。
3. 根据样品OD值在该曲线图上查出相应sICAM-含量，再乘上稀释倍数即可。
试剂盒性能
. 灵敏度：zui小的sICAM- 检测浓度小于5pg/ml。
2. 特异性：可同时检测重组或天然的小鼠sICAM-。不与小鼠其它细胞因子有交叉反应。
3. 重复性：板内、板见变异系数均小于0％。
注意事项
. 以上标准孔及待测样品均建议做复孔，每次测定应同时做标准曲线。
2. 洗涤过程很关键。洗涤不充分将导致度误差及OD值错误地升高。
3. 板条开封后剩余板条要再封好，保持板条干燥。
4. 本试剂盒宜置4oC冰箱保存。
5. 本仅用于科研，不能用于临床诊断！